妊娠糖尿病(gestational diabetes mellitus, GDM)是一种常见的孕期代谢紊乱,其发病率呈上升趋势[1]。GDM不仅影响孕妇和胎儿的近期健康,也可能增加子代未来罹患代谢性疾病的风险[2-4]。GDM的确切发病机制尚不明确,遗传因素、环境因素以及两者交互作用都与GDM的发生有关[5-6]。有证据显示,免疫功能失调也可能是GDM发生的重要因素之一[7]。正常妊娠过程中母体免疫系统需进行适应性调节以维持母胎耐受[8-9],若该过程失衡,免疫细胞功能异常可能参与糖代谢紊乱和胰岛素抵抗的形成,进一步引发GDM[10]。GDM患者中多种免疫细胞(如T细胞、B细胞、巨噬细胞和NK细胞)存在激活状态异常,伴随炎症因子(如TNF-α、IL-6)水平升高,这可能通过破坏胰岛功能、调节糖代谢等机制影响GDM的发生[11-12]。此外,单核细胞的激活也与胰岛素敏感性下降密切相关[13],提示免疫功能紊乱可能是GDM发病机制中的重要一环。总体来说,妊娠期免疫微环境的细微变化可能会影响糖代谢的敏感性并诱发GDM。明确妊娠期不同免疫细胞群体与糖尿病发生风险之间的关联,有助于开发新的预测模型,探索发现靶向免疫治疗方法[14]。尽管已有研究探讨了免疫功能的改变与GDM的关联,但尚无具体免疫细胞表型与GDM风险之间的因果关系的系统性分析。因此,本研究拟采用孟德尔随机化(Mendelian randomization,MR)方法,评估不同免疫细胞表型与GDM发生风险之间的关系,以期为GDM的免疫机制提供全新视角,并为临床实践提供理论指导。
1 资料与方法
1.1 研究设计
本研究基于两样本MR分析,评估免疫细胞特征与GDM之间的因果关系。MR使用遗传变异来表示风险因素,有效工具变量(instrumental variables,IVs)必须满足三个关键假设[15-16]:①IVs与暴露因素需存在稳定且强烈的统计学关联;②IVs不应受到暴露因素与结局变量之间其他混杂变量的影响;③IVs对结局变量的影响应仅通过暴露因素发挥作用。
1.2 数据来源
每个免疫特征的总全基因组关联分析(genome-wide association study,GWAS)数据可从GWAS目录中公开获得(注册号为GCST90001391至GCST90002121)。共有731种免疫表型,包括绝对细胞计数(absolute cell count,AC)(n=118)、反映表面抗原水平的中值荧光强度(median fluorescence intensity,MFI)(n=389)、形态参数(morphological parameters,MP)(n=32)、相对细胞计数(relative cell count,RC)(n=192) [17]。具体而言,MFI、AC和RC特征包含B细胞、传统树突状细胞(conventional dendritic cells,cDC)、成熟T细胞、单核细胞、骨髓细胞、TBNK细胞(T细胞、B细胞、自然杀伤细胞)和调节性T细胞(regulatory T cells,Treg),而MP特征包含cDC和TBNK细胞。用于免疫细胞特征的GWAS研究基于3 757名欧洲血缘参与者的外周血样本数据,所分析的731种免疫细胞表型涵盖了多种免疫细胞亚群的数量、比例及其表面标志表达等表型特征。基因型数据基于高密度阵列平台,通过使用撒丁岛人群的参考基因组进行序列比对、扩展及调整协变量(包括性别、年龄及其平方项)后,最终获得约2 200万个单核苷酸多态性(single-nucleotide polymorphism,SNP)位点 [18]。GDM的数据来源于芬兰数据库(https://www.finngen.fi/),该数据共涉及5 687名GDM患者及117 892名健康人群作为对照组。
1.3 工具变量的选择
为获得较多免疫细胞表型的IVs,本研究采用较为宽松的阈值(P<5×10-6)。为获得独立位点的IVs,本研究使用TwoSampleMR数据包数据,其连接不平衡阈值设置为R2<0.001,聚合距离为10 000 kb,并排除F值小于10的弱IVs[19]。在反向MR分析中,GDM作为暴露时,本研究将显著性水平调整为5×10-8,其余操作未发生改变。
1.4 统计学分析
本研究以逆方差加权法(inverse variance weighted,IVW)作为主要分析方法 [20],同时采用加权中位数法(weighted median estimator,WME)、MR-Egger回归法、简单模式法(simple mode,SM)及加权众数法(weighted mode,WM)进行补充验证[21]。在分析过程中,当IVW结果具有统计学意义(P<0.05)时,若其他方法结果虽未达到显著性水平但其效应方向与IVW一致,该结果仍被视为可靠。为控制多重比较带来的假阳性,采用Benjamini-Hochberg方法对P值进行假发现率(false discovery rate,FDR)校正。IV的异质性通过Cochran's Q检验进行评估,若P >0.05则采用固定效应IVW模型,若P<0.05则采用随机效应IVW模型[22]。通过MR-Egger回归的截距项检验水平多效性,若截距项P<0.05则认为存在显著的多效性[23]。当检测到多效性时,采用MR-PRESSO方法识别并剔除异常SNP后重新分析。此外,通过留一法敏感性分析评估单个SNP对整体结果的影响。所有分析均使用R 4.3.1软件及TwoSampleMR包完 成。
2 结果
2.1 工具变量
根据筛选标准(P<5×10-6)筛选与免疫细胞显著相关且彼此独立的SNPs作为正向MR分析的IV,选择与GDM显著相关(P<5×10-8)且彼此独立的SNPs作为反向MR分析的IV,所有IV的F值>10,表明弱IV偏倚的可能性较小,结果可靠性增大。
2.2 免疫表型与GDM风险的因果关系
2.2.1 MR分析
当以免疫表型为暴露因素,GDM为结局因素时,在0.05的显著性水平上,共鉴定出40种免疫表型与GDM的发展有因果关系。B细胞组13种,髓细胞组2种,成熟的T细胞组2种,TBNK细胞组8种,Treg细胞组6种,cDC细胞组6种,单核细胞组3例(表1)。
-
表格1 正向MR分析结果
Table1.Forward MR analysis results
在B细胞组中,CD20- CD38- %B cell 、CD20- CD38- %lymphocyte、CD19 on IgD+ CD24-、CD19 on IgD+ CD38-、CD19 on PB/PC、CD19 on sw mem、CD19 on IgD+、CD20 on IgD+ CD24-、CD20 on IgD- CD24-、CD20 on IgD+与GDM风险呈负相关,而IgD- CD38dim %B cell、IgD+ CD38dim %lymphocyte、CD38 on IgD+ CD38br与GDM风险呈正相关(表1)。
在髓细胞组中,CD45 on Gr MDSC、HLA DR on CD33- HLA DR+与GDM风险呈正相关(表1)。
在成熟的T细胞组中,HVEM on EM CD8br、HVEM on CD4+与GDM风险呈正相关(表1)。
在TBNK细胞组中,CD4+ CD8dim AC、CD45 on CD4+与GDM风险呈负相关,而HLA DR++ monocyte %leukocyte,DN (CD4-CD8-) AC、T cell %leukocyte、B cell AC、CD3 on NKT、SSC-A on myeloid DC与GDM风险呈正相关(表1)。
在Treg细胞组中,Activated & resting Treg %CD4+与GDM风险呈负相关,而CD3 on CD4+、CD4 on CD4 Treg、CD4 on resting Treg、CD4 on CD39+ activated Treg、CD4 on activated & secreting Treg与GDM风险呈正相关(表1)。
在cDC细胞组中,CCR2 on granulocyte与GDM风险呈负相关,而CD62L- plasmacytoid DC AC、SSC-A on HLA DR+T cell、HLA DR on myeloid DC、HLA DR on plasmacytoid DC、HLA DR on DC与GDM风险呈正相关(表1)。
在单核细胞组中,HLA DR on CD14+ CD16- monocyte、HLA DR on CD14+ monocyte、HLA DR on monocyte与GDM风险呈正相关。
FDR矫正后的结果及五种统计方法显示HLA DR on CD33- HLA DR+及HLA DR on DC仍然具有统计学意义(表1、表2),余四种方法的结果可见附件表1。
-
表格2 HLA DR on CD33- HLA DR+和HLA DR on DC对GDM的MR分析结果
Table2.Mendelian randomization results for GDM for HLA DR on CD33- HLA DR+ and HLA DR on DC
2.2.2 敏感性分析
Cochran's Q检验结果显示,CD20- CD38- %B cell、IgD- CD38dim %B cell存在异质性(P< 0.05),对于此两种免疫细胞表型,选择IVW方法的随机效应模型进行分析,其余免疫细胞表型未见明显异质性,采用IVW方法中的固定效应模型分析。IVW 的漏斗图结果显示,蓝色分界线两侧散点分布虽不均匀,但Cochran's Q检验未见异质性(附件图1)。在MR-Egger检验中,所有免疫细胞的多效性检验P值均大于0.05,异质性、多效性检验详细结果可见附件表2。使用留一法对结果进行敏感性分析,结果证明了所观察的因果关系较为稳健(附件图2)。
2.3 GDM与免疫表型的因果关系
当以GDM为暴露因素,免疫表型为结局因素时,以IVW法为主要分析方法,其他方法为辅助,结果显示,GDM与上述40种免疫表型均无因果关系,见附件表3。余四种方法的结果可见附件表4。
3 讨论
本研究发现B细胞群体中多个表型与GDM呈负向关联。如CD20- CD38- %B cell与GDM负相关,与B细胞在调节孕期免疫耐受方面的重要作用相吻合[24]。研究表明,B细胞可以分泌IL-10等抗炎因子,抑制过度的炎症反应[25]。此外,B细胞还可以通过诱导Treg细胞的产生来维持妊娠期免疫平衡 [26]。推测B细胞群体中特定表型可能通过上述途径影响妊娠期炎症状态,从而对妊娠期糖代谢产生保护作用,抑制GDM的发生。这为开发以B细胞为靶点的新型预防方案提供了理论依据。
其次,本研究发现TBNK细胞、Treg细胞、单核细胞等多个组别中也存在与GDM正相关的表型。Treg细胞的失调可能通过促进炎症反应增加胰岛素抵抗的风险。本研究结果显示Activated & resting Treg %CD4+增加与GDM 风险降低相关,提示总体Treg比例升高可能具有保护作用,这与以往研究结果一致[27];而多种Treg亚群上CD4分子表达增强(包括静息 Treg、CD39+活化 Treg 及活化并分泌型 Treg)均与 GDM 风险升高相关,这种双向模式表明:虽然Treg总体扩增有助于维持母胎免疫耐受,降低 GDM 风险,但 Treg出现异常活化或功能性偏移时,可能通过促进炎症反应反而增加胰岛素抵抗的风险[28-29]。本研究还发现单核细胞群体的表型与GDM正相关,表明单核细胞在慢性低度炎症反应中可能发挥了重要作用。单核细胞通过分泌促炎因子加剧炎症反应,进而影响胰岛素敏感性,提示GDM与慢性低度炎症状态相关[30]。研究表明,妊娠期炎症因子水平升高会导致胰岛素信号传导异常,进而诱发胰岛素抵抗[31]。与本研究的研究结果一致,即GDM患者体内可能存在免疫激活失调,导致异常炎症反应,继而影响糖代谢过程。
本研究发现经过FDR矫正后,HLA-DR on CD33- HLA-DR+、HLA-DR on DC与GDM仍然存在显著的正向因果关联,提示其在GDM的发生发展中可能发挥重要作用。HLA-DR作为主要组织相容性复合体II类分子,其在抗原呈递和免疫激活中的核心地位已被广泛认可[32-33]。CD33- HLA-DR+细胞主要代表非髓系来源的抗原呈递细胞,可能包括某些活化的树突状细胞(dendritic cell,DC)亚群,其高表达的HLA-DR反映出免疫系统的活跃状态[34]。免疫系统的异常激活,特别是抗原呈递细胞的功能失调,可能促进慢性炎症反应,干扰胰岛素信号通路,进而增加GDM的发病风险。同时,DC作为关键的免疫调节细胞,其成熟状态和功能由HLA-DR表达水平体现。在健康妊娠过程中,DC通常处于较为耐受的状态以维持胎儿免疫耐受[35]。然而,在GDM患者中,DC的HLA-DR表达显著升高,提示其免疫活化增强,可能促进炎症介质的释放,加剧代谢紊乱[36]。已有研究指出,GDM相关的系统性炎症状态与DC活化密切相关,可能是连接妊娠期免疫微环境改变与糖代谢异常的重要桥 梁[37]。
本研究中反向MR分析并未发现GDM与这些免疫表型存在因果关系,表明虽然免疫功能失调与GDM相关,但后者本身可能不会直接改变免疫细胞表型。因此,本研究推测这些免疫细胞变化更可能是妊娠期体内环境改变(如激素、营养状态改变等)对免疫系统的影响,而非GDM的直接结果。这一发现为本研究提供了重要的临床启示,在防治GDM时,应关注优化孕期营养状态、减轻孕期应激等综合临床措施,这可能对稳定孕期免疫功能更为重要[38]。
尽管本研究与Ji等[39]研究框架较为相似,但该文章采用的免疫细胞暴露阈值为1×10-5,本研究采用的阈值为5×10-6,故最终的结果或有不同,该文仅讨论部分FDR小于0.05的免疫细胞表型,本文更注重免疫细胞的分类,讨论的内容更为详 细。本研究也存在一定的局限性。首先,样本多为欧洲人群,结果的普适性有待进一步验证;其次,本研究为观察性研究,难以完全排除混杂因素,且机制层面仍需进一步的分子生物学研究加以证实。未来将开展多中心、前瞻性队列研究,结合多学科方法深入探讨免疫表型与GDM的关联,为临床实践提供更有力的证据支持。
综上所述,本研究揭示了免疫功能在GDM发病机制中的复杂作用, HLA DR on CD33- HLA DR+、HLA DR on DC可能是GDM发病的潜在风险因素。随着相关机制的进一步阐明,基于调节免疫功能的新型综合临床模式将为减轻GDM对母婴健康的危害提供新的手段。
附件见《医学新知》官网附录(https://yxxz.whuznhmedj.com/futureApi/storage/appendix/202410144.docx)
伦理声明:不适用
作者贡献:数据整理与分析、论文撰写:汪娟;数据分析与结果验证:王琼、林星光、叶晓荷;论文审定:申利
数据获取:本研究中使用和(或)分析的数据可联系通信作者获取
利益冲突声明:无
致谢:不适用
1.Choudhury AA, Devi Rajeswari V. Gestational diabetes mellitus - a metabolic and reproductive disorder[J]. Biomed Pharmacother, 2021, 143: 112183. DOI: 10.1016/j.biopha.2021.112183.
2.Guo HY, Tang SB, Li LJ, et al. Gestational diabetes mellitus causes genome hyper-methylation of oocyte via increased EZH2[J]. Nat Commun, 2025, 16(1): 127. DOI: 10.1038/s41467-024-55499-x.
3.Karcz K, Królak-Olejnik B. Impact of gestational diabetes mellitus on fetal growth and nutritional status in newborns[J]. Nutrients, 2024, 16(23): 4093. DOI: 10.3390/nu16234093.
4.Xu P, Dong S, Wu L, et al. Maternal and placental DNA methylation changes associated with the pathogenesis of gestational diabetes mellitus[J]. Nutrients, 2022, 15(1): 157. DOI: 10.3390/nu15010157.
5.Ustianowski Ł, Udzik J, Szostak J, et al. Genetic and epigenetic factors in gestational diabetes mellitus pathology[J]. Int J Mol Sci, 2023, 24(23): 16419. DOI: 10.3390/ijms242316619.
6.Ray GW, Zeng Q, Kusi P, et al. Genetic and inflammatory factors underlying gestational diabetes mellitus: a review[J]. Front Endocrinol (Lausanne), 2024, 15: 1399694. DOI: 10.3389/fendo.2024.1399694.
7.Li X, Yu D, Wang Y, et al. The intestinal dysbiosis of mothers with gestational diabetes mellitus (GDM) and its impact on the gut microbiota of their newborns[J]. Can J Infect Dis Med Microbiol, 2021, 2021: 3044534. DOI: 10.1155/2021/3044534.
8.Huang X, Wang L, Zhao S, et al. Pregnancy induces an immunological memory characterized by maternal immune alterations through specific genes methylation[J]. Front Immunol, 2021, 12: 686676. DOI: 10.3389/fimmu.2021.686676.
9.Chang RQ, Zhou WJ, Li DJ, et al. Innate lymphoid cells at the maternal-fetal interface in human pregnancy[J]. Int J Biol Sci, 2020, 16(6): 957-969. DOI: 10.7150/ijbs.38264.
10.Ying W, Fu W, Lee YS, et al. The role of macrophages in obesity-associated islet inflammation and β-cell abnormalities[J]. Nat Rev Endocrinol, 2020, 16(2): 81-90. DOI: 10.1038/s41574-019-0284-7.
11.Ji Q, Li X, Wang Y, et al. Periostin acts as a bridge between gestational diabetes mellitus (GDM) and chronic inflammation to modulate insulin resistance by modulating PPARα/NF-κB/TNF-α signaling pathway[J]. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets, 2023, 23(13): 1649-1659. DOI: 10.2174/1871530323666230427104724.
12.Zgutka K, Tkacz M, Tomasiak P, et al. Gestational diabetes mellitus-induced inflammation in the placenta via IL-1β and toll-like receptor pathways[J]. Int J Mol Sci, 2024, 25(21): 31245. DOI: 10.3390/ijms252111409.
13.Nakamura S, Mori K, Okuma H, et al. Age-associated decline of monocyte insulin sensitivity in diabetic and healthy individuals[J]. Diab Vasc Dis Res, 2021, 18(1): 1479164121989281. DOI: 10.1177/1479164121989281.
14.Draffin CR, Alderdice FA, McCance DR, et al. Exploring the needs, concerns and knowledge of women diagnosed with gestational diabetes: a qualitative study[J]. Midwifery, 2016, 40: 141-147. DOI: 10.1016/j.midw.2016.06.019.
15.Nazarzadeh M, Pinho-Gomes AC, Bidel Z, et al. Plasma lipids and risk of aortic valve stenosis: a Mendelian randomization study[J]. Eur Heart J, 2020, 41(40): 3913-3920. DOI: 10.1093/eurheartj/ehaa070.
16.Skrivankova VW, Richmond RC, Woolf BAR, et al. Strengthening the reporting of observational studies in epidemiology using Mendelian randomization[J]. JAMA, 2021, 326(16): 1614-1621. DOI: 10.1001/jama.2021.18236.
17.Zheng J, Baird D, Borges MC, et al. Recent developments in Mendelian randomization studies[J]. Curr Epidemiol Rep, 2017, 4(4): 330-345. DOI: 10.1007/s40471-017-0128-6.
18.Orru V, Steri M, Sidore C, et al. Complex genetic signatures in immune cells underlie autoimmunity and inform therapy[J]. Nat Genet, 2020, 52(10): 1036-1045. DOI: 10.1038/s41588-020-0684-4.
19.Pierce BL, Ahsan H, VanderWeele TJ. Power and instrument strength requirements for Mendelian randomization studies using multiple genetic variants[J]. Int J Epidemiol, 2011, 40(3): 740-752. DOI: 10.1093/ije/dyq151.
20.Burgess S, Scott RA, Timpson NJ, et al. Using published data in Mendelian randomization: a blueprint for efficient identification of causal risk factors[J]. Eur J Epidemiol, 2015, 30(7): 543-552. DOI: 10.1007/s10654-015-0011-z.
21.Bowden J, Davey Smith G, Haycock PC, et al. Consistent estimation in Mendelian randomization with some invalid instruments using a weighted median estimator[J]. Genet Epidemiol, 2016, 40(4): 304-314. DOI: 10.1002/gepi.21965.
22.Bowden J, Spiller W, Del Greco MF, et al. Improving the visualization, interpretation and analysis of two-sample summary data Mendelian randomization via the radial plot and radial regression[J]. Int J Epidemiol, 2018, 47(6): 2100-2110. DOI: 10.1093/ije/dyy213.
23.Bowden J, Davey Smith G, Burgess S. Mendelian randomization with invalid instruments: effect estimation and bias detection through egger regression[J]. Int J Epidemiol, 2015, 44(2): 512-525. DOI: 10.1093/ije/dyv080.
24.Verbanck M, Chen CY, Neale B, et al. Detection of widespread horizontal pleiotropy in causal relationships inferred from Mendelian randomization between complex traits and diseases[J]. Nat Genet, 2018, 50(5): 693-698. DOI: 10.1038/s41588-018-0099-7.
25.Cerqueira C, Manfroi B, Fillatreau S. IL-10-producing regulatory B cells and plasmocytes: molecular mechanisms and disease relevance[J]. Semin Immunol, 2019, 44: 101323. DOI: 10.1016/j.smim.2019.101323.
26.Dutta S, Sengupta P, Haque N. Reproductive immunomodulatory functions of B cells in pregnancy[J]. Int Rev Immunol, 2020, 39(2): 53-66. DOI: 10.1080/08830185.2019.1674299.
27.Schumacher A, Costa SD, Zenclussen AC. Endocrine factors modulating immune responses in pregnancy[J]. Frontiers in Immunology, 2014, 5: 196. DOI: 10.3389/fimmu.2014.00196.
28.Peng Y, Yu H, Yang J, et al. Altered Treg and Th17 cell responses in patients with gestational diabetes mellitus[J]. Gynecol Endocrinol, 2019, 35(8): 703-707. DOI: 10.1080/09513590.2019.1597343.
29.Barbosa P, Pinho A, Lázaro A, et al. Treg cells play a role in the obesity-associated insulin resistance [J]. Life Sci, 2024, 336: 122306. DOI: 10.1016/j.lfs.2023.122306.
30.Zhou T, Hu Z, Yang S, et al. Role of adaptive and innate immunity in type 2 diabetes mellitus[J]. J Diabetes Res, 2018, 2018: 7457269. DOI: 10.1155/2018/7457269.
31.Hotamisligil GS. Inflammation and metabolic disorders[J]. Nature, 2006, 444(7121): 860-867. DOI: 10.1038/nature05485.
32.Souwer Y, Chamuleau ME, van de Loosdrecht AA, et al. Detection of aberrant transcription of major histocompatibility complex class II antigen presentation genes in chronic lymphocytic leukaemia identifies HLA-DOA mRNA as a prognostic factor for survival[J]. Br J Haematol, 2009, 145(3): 334-343. DOI: 10.1111/j.1365-2141.2009.07695.x.
33.Macy AM, Herrmann LM, Adams AC, et al. Major histocompatibility complex class II in the tumor microenvironment: functions of nonprofessional antigen-presenting cells[J]. Curr Opin Immunol, 2023, 83: 102330. DOI: 10.1016/j.coi.2023.102330.
34.Kust SA, Ustiuzhanina MO, Streltsova MA, et al. HLA-DR expression in natural killer cells marks distinct functional states, depending on cell differentiation stage[J]. Int J Mol Sci, 2024, 25(9): 6551. DOI: 10.3390/ijms25094609.
35.Yang SW, Cho EH, Choi SY, et al. DC-SIGN expression in Hofbauer cells may play an important role in immune tolerance in fetal chorionic villi during the development of preeclampsia[J]. J Reprod Immunol, 2017, 124: 30-37. DOI: 10.1016/j.jri.2017. 09.012.
36.Wojcik M, Zielenia K, Zurawska-Klis M, et al. Increased expression of immune-related genes in leukocytes of patients with diagnosed gestational diabetes mellitus (GDM) [J]. Exp Biol Med (Maywood), 2016, 241(5): 457-465. DOI: 10.1177/1535370215615699.
37.Wu L, Yan Z, Jiang Y, et al. Metabolic regulation of dendritic cell activation and immune function during inflammation[J]. Front Immunol, 2023, 14: 1140749. DOI: 10.3389/fimmu.2023. 1140749.
38.康静, 薄运兰, 李滔, 等. 中国妊娠期糖尿病孕妇不良妊娠结局危险因素的Meta分析[J]. 数理医药学杂志, 2024, 37(11): 847-851. [Kang J, Bo YL, Li T, et al. Risk factors of adverse pregnancy outcomes in pregnant women with gestational diabetes mellitus in China: a Meta-analysis[J]. Journal of Mathematical Medicine, 2024, 37(11): 847-851.] DOI: 10.12173/j.issn.1004-4337.202407152.
39.Ji Z, Zhang C, Yuan J, et al. Is there a causal association between gestational diabetes mellitus and immune mediators? A bidirectional Mendelian randomization analysis[J]. Front Endocrinol, 2024, 15: 1358144. DOI: 10.3389/fendo.2024.1358144.