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免疫表型与妊娠糖尿病的因果关联:基于孟德尔随机化分析

发表时间:2025年10月31日阅读量:49次下载量:15次下载手机版

作者: 汪娟 1 王琼 2 林星光 3 叶晓荷 1 申利 1

作者单位: 1. 华中科技大学同济医学院附属梨园医院妇产科(武汉 430077) 2. 崇阳县妇幼保健院妇产科(湖北咸宁 437500) 3. 华中科技大学同济医学院附属同济医院妇产科(武汉 430030)

关键词: 妊娠糖尿病 免疫细胞表型 孟德尔随机化 全基因组关联分析 因果关系

DOI: 10.12173/j.issn.1004-5511.202410144

基金项目: 基金项目: 湖北省自然科学基金(2019CFB546)

引用格式:汪 娟,王 琼,林星光,叶晓荷,申 利. 免疫表型与妊娠糖尿病的因果关联:基于孟德尔随机化分析[J]. 医学新知, 2025, 35(10): 1173-1180. DOI: 10.12173/j.issn.1004-5511.202410144.

Wang J, Wang Q, Lin XG, Ye XH, Shen L. Exploring the causal association of immunophenotypes on gestational diabetes mellitus based on Mendelian randomization[J]. Yixue Xinzhi Zazhi, 2025, 35(10): 1173-1180. DOI: 10.12173/j.issn.1004-5511.202410144. [Article in Chinese]

摘要|Abstract

目的  采用孟德尔随机化(MR)方法探讨免疫细胞表型与妊娠糖尿病(GDM)发生风险之间的因果关系。

方法  利用来自欧洲人群的全基因组关联分析数据,提取731种免疫细胞特征作为工具变量,GDM的数据来源于芬兰数据库。主要采用逆方差加权法,并以加权中位数法、MR-Egger回归法、简单模式法及加权众数法进行补充验证以评估免疫细胞表型与GDM之间的因果关系,并进行异质性检验、多效性检验及敏感性分析。利用反向MR分析评估GDM对免疫表型的潜在因果影响。

结果  初始分析发现40种免疫表型与GDM风险存在潜在因果关联;经校正后(FDR<0.05),HLA DR on CD33- HLA DR+ [OR=1.107,95%CI(1.050,1.166)]、HLA DR on DC [OR=1.098,95%CI(1.048,1.150)]与GDM风险升高存在显著正相关关系。反向MR分析未发现GDM与上述40种免疫表型存在显著因果影响(P>0.05)。

结论  特定免疫细胞表型(HLA DR on CD33- HLA DR+、HLA DR on DC)可能是GDM发病的潜在因果风险因素,可能为未来的风险预测和免疫干预策略提供靶 点。

全文|Full-text

妊娠糖尿病(gestational diabetes mellitus, GDM)是一种常见的孕期代谢紊乱,其发病率呈上升趋势[1]。GDM不仅影响孕妇和胎儿的近期健康,也可能增加子代未来罹患代谢性疾病的风险[2-4]。GDM的确切发病机制尚不明确,遗传因素、环境因素以及两者交互作用都与GDM的发生有关[5-6]。有证据显示,免疫功能失调也可能是GDM发生的重要因素之一[7]。正常妊娠过程中母体免疫系统需进行适应性调节以维持母胎耐受[8-9],若该过程失衡,免疫细胞功能异常可能参与糖代谢紊乱和胰岛素抵抗的形成,进一步引发GDM[10]。GDM患者中多种免疫细胞(如T细胞、B细胞、巨噬细胞和NK细胞)存在激活状态异常,伴随炎症因子(如TNF-α、IL-6)水平升高,这可能通过破坏胰岛功能、调节糖代谢等机制影响GDM的发生[11-12]。此外,单核细胞的激活也与胰岛素敏感性下降密切相关[13],提示免疫功能紊乱可能是GDM发病机制中的重要一环。总体来说,妊娠期免疫微环境的细微变化可能会影响糖代谢的敏感性并诱发GDM。明确妊娠期不同免疫细胞群体与糖尿病发生风险之间的关联,有助于开发新的预测模型,探索发现靶向免疫治疗方法[14]。尽管已有研究探讨了免疫功能的改变与GDM的关联,但尚无具体免疫细胞表型与GDM风险之间的因果关系的系统性分析。因此,本研究拟采用孟德尔随机化(Mendelian randomization,MR)方法,评估不同免疫细胞表型与GDM发生风险之间的关系,以期为GDM的免疫机制提供全新视角,并为临床实践提供理论指导。

1 资料与方法

1.1 研究设计

本研究基于两样本MR分析,评估免疫细胞特征与GDM之间的因果关系。MR使用遗传变异来表示风险因素,有效工具变量(instrumental variables,IVs)必须满足三个关键假设[15-16]:①IVs与暴露因素需存在稳定且强烈的统计学关联;②IVs不应受到暴露因素与结局变量之间其他混杂变量的影响;③IVs对结局变量的影响应仅通过暴露因素发挥作用。

1.2 数据来源

每个免疫特征的总全基因组关联分析(genome-wide association study,GWAS)数据可从GWAS目录中公开获得(注册号为GCST90001391至GCST90002121)。共有731种免疫表型,包括绝对细胞计数(absolute cell count,AC)(n=118)、反映表面抗原水平的中值荧光强度(median fluorescence intensity,MFI)(n=389)、形态参数(morphological parameters,MP)(n=32)、相对细胞计数(relative cell count,RC)(n=192) [17]。具体而言,MFI、AC和RC特征包含B细胞、传统树突状细胞(conventional dendritic cells,cDC)、成熟T细胞、单核细胞、骨髓细胞、TBNK细胞(T细胞、B细胞、自然杀伤细胞)和调节性T细胞(regulatory T cells,Treg),而MP特征包含cDC和TBNK细胞。用于免疫细胞特征的GWAS研究基于3 757名欧洲血缘参与者的外周血样本数据,所分析的731种免疫细胞表型涵盖了多种免疫细胞亚群的数量、比例及其表面标志表达等表型特征。基因型数据基于高密度阵列平台,通过使用撒丁岛人群的参考基因组进行序列比对、扩展及调整协变量(包括性别、年龄及其平方项)后,最终获得约2 200万个单核苷酸多态性(single-nucleotide polymorphism,SNP)位点 [18]。GDM的数据来源于芬兰数据库(https://www.finngen.fi/),该数据共涉及5 687名GDM患者及117 892名健康人群作为对照组。

1.3 工具变量的选择

为获得较多免疫细胞表型的IVs,本研究采用较为宽松的阈值(P<5×10-6)。为获得独立位点的IVs,本研究使用TwoSampleMR数据包数据,其连接不平衡阈值设置为R2<0.001,聚合距离为10 000 kb,并排除F值小于10的弱IVs[19]。在反向MR分析中,GDM作为暴露时,本研究将显著性水平调整为5×10-8,其余操作未发生改变。

1.4 统计学分析

本研究以逆方差加权法(inverse variance weighted,IVW)作为主要分析方法 [20],同时采用加权中位数法(weighted median estimator,WME)、MR-Egger回归法、简单模式法(simple mode,SM)及加权众数法(weighted mode,WM)进行补充验证[21]。在分析过程中,当IVW结果具有统计学意义(P<0.05)时,若其他方法结果虽未达到显著性水平但其效应方向与IVW一致,该结果仍被视为可靠。为控制多重比较带来的假阳性,采用Benjamini-Hochberg方法对P值进行假发现率(false discovery rate,FDR)校正。IV的异质性通过Cochran's Q检验进行评估,若P >0.05则采用固定效应IVW模型,若P<0.05则采用随机效应IVW模型[22]。通过MR-Egger回归的截距项检验水平多效性,若截距项P<0.05则认为存在显著的多效性[23]。当检测到多效性时,采用MR-PRESSO方法识别并剔除异常SNP后重新分析。此外,通过留一法敏感性分析评估单个SNP对整体结果的影响。所有分析均使用R 4.3.1软件及TwoSampleMR包完 成。

2 结果

2.1 工具变量

根据筛选标准(P<5×10-6)筛选与免疫细胞显著相关且彼此独立的SNPs作为正向MR分析的IV,选择与GDM显著相关(P<5×10-8)且彼此独立的SNPs作为反向MR分析的IV,所有IV的F值>10,表明弱IV偏倚的可能性较小,结果可靠性增大。

2.2 免疫表型与GDM风险的因果关系

2.2.1 MR分析

当以免疫表型为暴露因素,GDM为结局因素时,在0.05的显著性水平上,共鉴定出40种免疫表型与GDM的发展有因果关系。B细胞组13种,髓细胞组2种,成熟的T细胞组2种,TBNK细胞组8种,Treg细胞组6种,cDC细胞组6种,单核细胞组3例(表1)。

  • 表格1 正向MR分析结果
    Table1.Forward MR analysis results

在B细胞组中,CD20- CD38- %B cell 、CD20- CD38- %lymphocyte、CD19 on IgD+ CD24-、CD19 on IgD+ CD38-、CD19 on PB/PC、CD19 on sw mem、CD19 on IgD+、CD20 on IgD+ CD24-、CD20 on IgD- CD24-、CD20 on IgD+与GDM风险呈负相关,而IgD- CD38dim %B cell、IgD+ CD38dim %lymphocyte、CD38 on IgD+ CD38br与GDM风险呈正相关(表1)。

在髓细胞组中,CD45 on Gr MDSC、HLA DR on CD33- HLA DR+与GDM风险呈正相关(表1)。

在成熟的T细胞组中,HVEM on EM CD8br、HVEM on CD4+与GDM风险呈正相关(表1)。

在TBNK细胞组中,CD4+ CD8dim AC、CD45 on CD4+与GDM风险呈负相关,而HLA DR++ monocyte %leukocyte,DN (CD4-CD8-) AC、T cell %leukocyte、B cell AC、CD3 on NKT、SSC-A on myeloid DC与GDM风险呈正相关(表1)。

在Treg细胞组中,Activated & resting Treg %CD4+与GDM风险呈负相关,而CD3 on CD4+、CD4 on CD4 Treg、CD4 on resting Treg、CD4 on CD39+ activated Treg、CD4 on activated & secreting Treg与GDM风险呈正相关(表1)。

在cDC细胞组中,CCR2 on granulocyte与GDM风险呈负相关,而CD62L- plasmacytoid DC AC、SSC-A on HLA DR+T cell、HLA DR on myeloid DC、HLA DR on plasmacytoid DC、HLA DR on DC与GDM风险呈正相关(表1)。

在单核细胞组中,HLA DR on CD14+ CD16- monocyte、HLA DR on CD14+ monocyte、HLA DR on monocyte与GDM风险呈正相关。

FDR矫正后的结果及五种统计方法显示HLA DR on CD33- HLA DR+及HLA DR on DC仍然具有统计学意义(表1、表2),余四种方法的结果可见附件表1。

  • 表格2 HLA DR on CD33- HLA DR+和HLA DR on DC对GDM的MR分析结果
    Table2.Mendelian randomization results for GDM for HLA DR on CD33- HLA DR+ and HLA DR on DC

2.2.2 敏感性分析

Cochran's Q检验结果显示,CD20- CD38- %B cell、IgD- CD38dim %B cell存在异质性(P< 0.05),对于此两种免疫细胞表型,选择IVW方法的随机效应模型进行分析,其余免疫细胞表型未见明显异质性,采用IVW方法中的固定效应模型分析。IVW 的漏斗图结果显示,蓝色分界线两侧散点分布虽不均匀,但Cochran's Q检验未见异质性(附件图1)。在MR-Egger检验中,所有免疫细胞的多效性检验P值均大于0.05,异质性、多效性检验详细结果可见附件表2。使用留一法对结果进行敏感性分析,结果证明了所观察的因果关系较为稳健(附件图2)。

2.3 GDM与免疫表型的因果关系

当以GDM为暴露因素,免疫表型为结局因素时,以IVW法为主要分析方法,其他方法为辅助,结果显示,GDM与上述40种免疫表型均无因果关系,见附件表3。余四种方法的结果可见附件表4。

3 讨论

本研究发现B细胞群体中多个表型与GDM呈负向关联。如CD20- CD38- %B cell与GDM负相关,与B细胞在调节孕期免疫耐受方面的重要作用相吻合[24]。研究表明,B细胞可以分泌IL-10等抗炎因子,抑制过度的炎症反应[25]。此外,B细胞还可以通过诱导Treg细胞的产生来维持妊娠期免疫平衡 [26]。推测B细胞群体中特定表型可能通过上述途径影响妊娠期炎症状态,从而对妊娠期糖代谢产生保护作用,抑制GDM的发生。这为开发以B细胞为靶点的新型预防方案提供了理论依据。

其次,本研究发现TBNK细胞、Treg细胞、单核细胞等多个组别中也存在与GDM正相关的表型。Treg细胞的失调可能通过促进炎症反应增加胰岛素抵抗的风险。本研究结果显示Activated  & resting Treg %CD4+增加与GDM 风险降低相关,提示总体Treg比例升高可能具有保护作用,这与以往研究结果一致[27];而多种Treg亚群上CD4分子表达增强(包括静息 Treg、CD39+活化 Treg 及活化并分泌型 Treg)均与 GDM 风险升高相关,这种双向模式表明:虽然Treg总体扩增有助于维持母胎免疫耐受,降低 GDM 风险,但 Treg出现异常活化或功能性偏移时,可能通过促进炎症反应反而增加胰岛素抵抗的风险[28-29]。本研究还发现单核细胞群体的表型与GDM正相关,表明单核细胞在慢性低度炎症反应中可能发挥了重要作用。单核细胞通过分泌促炎因子加剧炎症反应,进而影响胰岛素敏感性,提示GDM与慢性低度炎症状态相关[30]。研究表明,妊娠期炎症因子水平升高会导致胰岛素信号传导异常,进而诱发胰岛素抵抗[31]。与本研究的研究结果一致,即GDM患者体内可能存在免疫激活失调,导致异常炎症反应,继而影响糖代谢过程。

本研究发现经过FDR矫正后,HLA-DR on CD33- HLA-DR+、HLA-DR on DC与GDM仍然存在显著的正向因果关联,提示其在GDM的发生发展中可能发挥重要作用。HLA-DR作为主要组织相容性复合体II类分子,其在抗原呈递和免疫激活中的核心地位已被广泛认可[32-33]。CD33- HLA-DR+细胞主要代表非髓系来源的抗原呈递细胞,可能包括某些活化的树突状细胞(dendritic cell,DC)亚群,其高表达的HLA-DR反映出免疫系统的活跃状态[34]。免疫系统的异常激活,特别是抗原呈递细胞的功能失调,可能促进慢性炎症反应,干扰胰岛素信号通路,进而增加GDM的发病风险。同时,DC作为关键的免疫调节细胞,其成熟状态和功能由HLA-DR表达水平体现。在健康妊娠过程中,DC通常处于较为耐受的状态以维持胎儿免疫耐受[35]。然而,在GDM患者中,DC的HLA-DR表达显著升高,提示其免疫活化增强,可能促进炎症介质的释放,加剧代谢紊乱[36]。已有研究指出,GDM相关的系统性炎症状态与DC活化密切相关,可能是连接妊娠期免疫微环境改变与糖代谢异常的重要桥 梁[37]。

本研究中反向MR分析并未发现GDM与这些免疫表型存在因果关系,表明虽然免疫功能失调与GDM相关,但后者本身可能不会直接改变免疫细胞表型。因此,本研究推测这些免疫细胞变化更可能是妊娠期体内环境改变(如激素、营养状态改变等)对免疫系统的影响,而非GDM的直接结果。这一发现为本研究提供了重要的临床启示,在防治GDM时,应关注优化孕期营养状态、减轻孕期应激等综合临床措施,这可能对稳定孕期免疫功能更为重要[38]。

尽管本研究与Ji等[39]研究框架较为相似,但该文章采用的免疫细胞暴露阈值为1×10-5,本研究采用的阈值为5×10-6,故最终的结果或有不同,该文仅讨论部分FDR小于0.05的免疫细胞表型,本文更注重免疫细胞的分类,讨论的内容更为详 细。本研究也存在一定的局限性。首先,样本多为欧洲人群,结果的普适性有待进一步验证;其次,本研究为观察性研究,难以完全排除混杂因素,且机制层面仍需进一步的分子生物学研究加以证实。未来将开展多中心、前瞻性队列研究,结合多学科方法深入探讨免疫表型与GDM的关联,为临床实践提供更有力的证据支持。

综上所述,本研究揭示了免疫功能在GDM发病机制中的复杂作用, HLA DR on CD33- HLA DR+、HLA DR on DC可能是GDM发病的潜在风险因素。随着相关机制的进一步阐明,基于调节免疫功能的新型综合临床模式将为减轻GDM对母婴健康的危害提供新的手段。

附件见《医学新知》官网附录(https://yxxz.whuznhmedj.com/futureApi/storage/appendix/202410144.docx

伦理声明:不适用

作者贡献:数据整理与分析、论文撰写:汪娟;数据分析与结果验证:王琼、林星光、叶晓荷;论文审定:申利

数据获取:本研究中使用和(或)分析的数据可联系通信作者获取

利益冲突声明:

致谢:不适用

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